外泌体下篇: 澄清与超滤工艺解构

2025.06.17 20

澄清过滤:外泌体样本预处理与标准化


01 样本类型与预处理方案

为兼顾不同来源外泌体的处理需求,澄清方案如下表5所示:



02 Pmax标准化操作流程

1. 系统组装与参数设置

· 装置搭建

按Pmax要求组装过滤系统(泵→压力传感器→过滤器→收集罐),优先选择深层滤膜包(如1070PE)或PP囊式滤器。


· 通量匹配:

贴壁样本控制在150~200LMH;悬浮/植物/乳源控制在100~150LMH;


· 滞留体积测定:

以去离子水预充管路,设置初始通量150LMH,排空空气后测定滞留体积(15-45mL),用于后续产率校准。


2. 过滤过程的过程控制

Pmax操作步骤如下表6所示:



3. 数据分析与放大计算

· 绘制阻力-载量曲线:

以载量(L/m²)为X轴,过滤阻力(psi)为Y轴绘制数据(图1)。



· 安全系数与安装面积:

推荐安装面积:Arecommend = Amin × 1.5。实际安装面积(Ainstall)需≥Arecommend,并计算安全系数(SF= Ainstall / Amin)。




超滤换液:工艺适应性测试


01 中空纤维选型

外泌体具有柔韧性和可变形性,在外部压力(如跨膜压TMP)或剪切力作用下,外泌体可发生暂时性形变(如压扁或拉伸),压力大小及缓冲液性质(如粘度、离子强度、渗透压)也会影响形变,这些因素会导致外泌体缩小表观尺寸,从而通过比其标称直径更小的膜孔。故需结合实验数据进行中空纤维膜孔选择和工艺参数的优化。


结合应用端数据,外泌体超滤选型如下表所示:




02 确认最佳剪切速率

· 目标:

确定兼顾高通量与外泌体稳定性的剪切速率范围。


· 剪切速率设置:

分别设置切向流量对应的剪切速率为2000 s⁻¹、3000 s⁻¹、4000s⁻¹保持跨膜压(TMP)恒定(初始建议3~7psi)。


· 监测指标:

平均通量(LMH):记录单位膜面积透出液流量。

工艺时间:完成相同浓缩倍数所需时间。


· 外泌体稳定性:

粒径分布:通过NTA或DLS检测处理前后外泌体平均粒径及分散系数(PDI)

标志物完整性:WB检测CD63、TSG101等标志物表达量。

形态观察:冷冻电镜(Cryo-EM)观察外泌体结构是否破裂或聚集。


· 结论判断:

选择通量高、工艺时间短且外泌体稳定性(PDI<0.2,标志物回收率>90%)的最佳剪切速率。


03 确认最佳TMP

最佳跨膜压(TMP)摸索

·目标:

确定避免外泌体穿透且通量最大化的TMP范围。


·实验设计:

TMP梯度设置:

根据料液黏度差异(如高黏度乳源外泌体 vs 低黏度MSC来源),设置TMP梯度:

①低黏度料液:3psi、5psi、7psi。

②高黏度料液:10psi、15psi、20psi。


监测指标:

通量-TMP曲线:绘制通量随TMP变化的趋势,识别压力不相关区拐点。


外泌体穿透率:

①透出液中外泌体含量检测(NTA或ELISA定量标志物);

②穿透率要求:<5%(基于初始总颗粒数)。


浓差极化评估:

通量下降速率与TMP的关联性。


结论判断:

选择拐点前TMP值(通量仍处于压力相关区),并确保无显著外泌体穿透。


04 确认最佳浓缩倍数及透析倍数

·目标:

平衡通量、工艺时间、杂质去除率与外泌体活性。


·实验设计:

浓缩倍数优化:

设定目标浓缩倍数:5×、10×、15×(需要考虑高倍浓缩时进行透析带来的渗透压影响)


监测指标:

①外泌体回收率(NTA或ELISA)。

②杂质残留(总蛋白浓度检测,如BCA法)。

③外泌体聚集风险(PDI变化)。


透析倍数优化:

采用等体积透析(DF)模式,设定透析倍数:3×、5×、7×(缓冲液体积倍数)。


监测指标:

①杂质去除率(HCP检测、pH或电导率变化);

②外泌体回收率及活性(标志物表达)。


结论判断:

选择回收率>90%、杂质去除率>95%的浓缩与透析组合参数。


05 中空纤维操作步骤

流程如下:

超滤换液:组件安装→水冲洗(纯化水)→0.5mol/L NaOH消毒→水冲洗(纯化水)→水通量测试→完整性测试→Buffer平衡→TMP优化→浓缩换液(透析步骤检测电导/pH)→顶洗回收→Buffer冲洗→水冲洗→0.5mol/L Na清洗→水冲洗→水通量测试→完整性测试→0.1mol/L NaOH保存;


(1)系统组装与预处理:

安装中空纤维柱(根据MWCO选择),连接泵、压力传感器、循环罐。用超纯水冲洗系统至无气泡,进行碱消毒及水冲洗后,测试使用前水通量,并进行完整性测试,再用缓冲液平衡3~5分钟。


(2)参数初始化:

设置初始剪切速率(如3000 s⁻¹)、TMP(如0.8 bar)。启动切向流循环,循环3~5分钟。


(3)浓缩阶段:

调节回流端阀门,控制TMP。实时监测通量、压力及料液体积,记录工艺时间。


(4)透析阶段

切换至等体积透析模式,以恒定速度加入透析缓冲液。监测电导率至稳定(杂质置换完成标志)。


(5)收样与清洗:

收集截留液(外泌体产物),检测回收率及杂质残留。用0.5 M NaOH清洗膜柱,并用超纯水冲洗,测试使用后水通量,评估膜柱清洗效果;并进行完整性测试,确保中空纤维膜无破损。使用后的中空纤维可使用0.1mol/L NaOH进行保存。



质量控制


01 物理特性检测

粒径与浓度:

①方法:纳米颗粒追踪分析(NTA)、动态光散射(DLS)。

②标准:粒径分布(30-150 nm),多分散指数(PDI<0.2)。形态完整性:透射电镜(TEM)观察囊泡结构。


02 生化特性检测

标志物鉴定:

①阳性标志物:CD9/CD63/CD81(ELISA/Western Blot)。

②阴性标志物:Calnexin/细胞色素C(排除细胞碎片污染)。


核酸含量:

①RNA:qPCR检测miRNA或总RNA浓度(RIN>7);

②DNA:基因组DNA残留量(<5%)。


03 安全性检测

内毒素:鲎试剂法(LAL),药品级需<0.25 EU/mL。

无菌性:微生物限度检查(膜过滤法,需符合药典标准)。

宿主蛋白残留:BCA法或ELISA检测(根据来源设定阈值)。


04 功能验证

生物活性:

①细胞摄取实验(荧光标记外泌体+流式/共聚焦显微镜分析);

②体外功能验证(如干细胞外泌体促迁移/抗炎活性)。载药效率(如适用): HPLC/UPLC定量包封率与载药量。




外泌体作为一种新兴的生物载体,其工艺与质量的研究仍在不断探索和完善,以推动其在生物医药、医美等领域的应用进程。外泌体的分离、纯化及其质量控制是研究和应用的关键环节。随着技术的不断进步,外泌体的产业化进程也会大大加快。在制药领域,市场将会建立标准化的外泌体生产和质量控制体系,以确保其临床应用的安全性和有效性。



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